Natuurlijke acute antihistaminica tegen allergieën

11 juni 2018

Door: Monique van Iwaarde

Wereldwijd lijden miljoenen mensen aan een allergische aandoening. De ernst hiervan en het aantal mensen dat eraan lijdt, is de laatste 25 jaar verdubbeld.1 De functionele geneeskunde gaat op zoek naar de onderliggende oorzaken. Gedurende de zoektocht naar de oorzaken kan er eventueel (acuut) een natuurlijk antihistaminicum worden ingezet. In dit artikel worden enkele natuurlijke antihistaminica besproken die hiervoor in aanmerking komen.

De meest voorkomende allergieën zijn allergische rhinitis (hooikoorts), huisstofmijtallergie, allergisch astma, contactallergie, huisdierenallergie en voedselallergie. Een allergie kan een hevige ontstekingsreactie opwekken. Dit is het antwoord van het lichaam op het binnenkomen van lichaamsvreemde stoffen en op cel- en weefselschade als gevolg daarvan, met als doel deze te herstellen door middel van een serie reacties. Allereerst neemt de permeabiliteit van de bloedvaten toe, waarna de migratie van immuuncellen naar de beschadigde locatie<i(s) op gang komt. Vervolgens worden er inflammatoire mediatoren afgegeven en worden de dode cellen vernietigd en verwijderd door middel van fagocytose. Tot slot ontstaat er groei van nieuw weefsel en bloedvaten. Wanneer de reacties onvolledig verlopen of als deze aanhouden, leidt dit tot een chronische ontsteking.2,4

Een ontstekingsproces wordt gekenmerkt door een gecoördineerde activering van verschillende signaalroutes die de expressie reguleren van zowel pro- als anti-inflammatoire mediatoren. Het proteïne NF-κB speelt hierin een belangrijke rol door te functioneren als een aan- en uitschakelaar. Het ontstekingsproces begint met celschade, waardoor fosfolipiden vrijkomen uit het celmembraan. Door middel van het enzym fosfolipase A2 (PLA2) worden deze omgezet in arachidonzuur, dat vervolgens wordt geactiveerd door pro-inflammatoire cytokinen (o.a. TNF-α en IL-6). Daarna wordt arachidonzuur door de enzymen cyclo-oxygenase en lipoxygenase via een serie reacties omgezet in een groep pro-inflammatoire cytokinen, eicosanoïden genaamd. Deze kunnen onderverdeeld worden in onder andere prostaglandinen, tromboxanen en leukotriënen, en ontstekingsziekten veroorzaken als allergie en astma. De anti-inflammatoire cytokinen (o.a. IL-4, IL-5 en IL-10) hebben de taak om de ontstekingsreactie op te lossen.6

www.voedingvaniwaarde.nl, www.natuurdietisten.nl

Lees het gehele artikel vanaf pagina 24 in OrthoFyto 3/18.

Wilt u het hele artikel als PDF ontvangen? Bestel het dan hier voor € 3,50

Bronvermelding:

  1. Wageningen University & Research. Toename in aantal – WUR.
  2. G.T. Rijkers; T.G. Rijkers; F.G.M. Kroese; C.G.M. Kallenberg; R.H.W.M. Derksen. Immunologie. 2009.
  3. Rajan T V. The Gell-–Coombs classification of hypersensitivity reactions: a re-interpretation. Trends Immunol. 2003;24(7):376–379.
  4. Galli SJ, Tsai M, Piliponsky AM. The development of allergic inflammation. Nature. 2008;454(7203):445–454.
  5. Kulka M. The potential of natural products as effective treatments for allergic inflammation: implications for allergic rhinitis. Curr Top Med Chem. 2009;9(17):1611–1624.
  6. Chen S. Natural products triggering biological targets–a review of the anti-inflammatory phytochemicals targeting the arachidonic acid pathway in allergy asthma and rheumatoid arthritis. Curr Drug Targets. 2011;12(3):288–301.
  7. Antihistaminica, systemisch en lokaal | Farmacotherapeutisch Kompas. Published 2018.
  8. Goda Y, Hoshino K, Akiyama H, e.a. Constituents in watercress: inhibitors of histamine release from RBL-2H3 cells induced by antigen stimulation. Biol Pharm Bull. 1999;22(12):1319–1326.
  9. Kaiser P, Youssouf MS, Tasduq SA, e.a. Anti-Allergic Effects of Herbal Product from Allium cepa (Bulb). J Med Food. 2009;12(2):374–382.
  10. HÖGBERG B, UVNÄS. B. Inhibitory Action of Allicin on Degranulation of Mast Cells Produced by Compound 48/80, Histamine Liberator from Ascaris, Lecithinase A, and Antigen. Acta Physiol Scand. 1958;44(2):157–162.
  11. Masini E, Bani D, Marzocca C, e.a. Pea seedling histaminase as a novel therapeutic approach to anaphylactic and inflammatory disorders. A plant histaminase in allergic asthma and ischemic shock. ScientificWorldJournal. 2007;7:888–902.
  12. Li L, Li M, Ren H, Shi Y-J, Dong Y. Anti-allergic effects and related active constituents of mung bean (Vignaradiatus Linn) sprouts. Food Sci Biotechnol. 2016;25(2):553–559.
  13. Mehta A, Agrawal B. Investigation into the mechanism of action of Moringa oleifera for its anti-asthmatic activity. 2008;8(1):24–31.
  14. Sridevi, G.; Gopkumar, P.; Ashok, Shenoy; Shastry CS. Pharmacological Basis For Antianaphylactic, Antihistaminic And Mast Cell Stabilization Activity Of Ocimum Sanctum. Internet J Pharmacol. 2009;7(1):1.
  15. WATANABE J, SHINMOTO H, TSUSHIDA T. Coumarin and Flavone Derivatives from Estragon and Thyme as Inhibitors of Chemical Mediator Release from RBL-2H3 Cells. Biosci Biotechnol Biochem. 2005;69(1):1–6.
  16. Chandrashekhar VM, Halagali KS, Nidavani RB, e.a. Anti-allergic activity of German chamomile (Matricaria recutita L.) in mast cell mediated allergy model. J Ethnopharmacol. 2011;137(1):336–340.
  17. Inoue T, Sugimoto Y, Masuda H, Kamei C. Antiallergic effect of flavonoid glycosides obtained from Mentha piperita L. Biol Pharm Bull. 2002;25(2):256–259.
  18. Kanter M, Coskun O, Uysal H. The antioxidative and antihistaminic effect of Nigella sativa and its major constituent, thymoquinone on ethanol-induced gastric mucosal damage. Arch Toxicol. 2006;80(4):217–224.
  19. Matsuda H, Morikawa T, Managi H, Yoshikawa M. Antiallergic principles from Alpinia galanga: structural requirements of phenylpropanoids for inhibition of degranulation and release of TNF-α and IL-4 in RBL-2H3 cells. Bioorg Med Chem Lett. 2003;13(19):3197–3202.
  20. Chen B-H, Wu P-Y, Chen K-M, Fu T-F, Wang H-M, Chen C-Y. Antiallergic Potential on RBL-2H3 Cells of Some Phenolic Constituents of Zingiber officinale (Ginger). J Nat Prod. 2009;72(5):950–953.
  21. Mukherjee D, Biswas A, Bhadra S, e.a. Exploring the potential of Nelumbo nucifera rhizome on membrane stabilization, mast cell protection, nitric oxide synthesis, and expression of costimulatory molecules. Immunopharmacol Immunotoxicol. 2010;32(3):466–472.
  22. Lee JH, Kim JW, Ko NY, e.a. Curcumin, a constituent of curry, suppresses IgE-mediated allergic response and mast cell activation at the level of Syk. J Allergy Clin Immunol. 2008;121(5):1225–1231.
  23. Kurup VP, Barrios CS. Immunomodulatory effects of curcumin in allergy. Mol Nutr Food Res. 2008;52(9):1031–1039.
  24. Rasheed Z, Akhtar N, Anbazhagan AN, Ramamurthy S, Shukla M, Haqqi TM. Polyphenol-rich pomegranate fruit extract (POMx) suppresses PMACI-induced expression of pro-inflammatory cytokines by inhibiting the activation of MAP Kinases and NF-kappaB in human KU812 cells. J Inflamm (Lond). 2009;6:1.
  25. KANDA T, AKIYAMA H, YANAGIDA A, e.a. Inhibitory Effects of Apple Polyphenol on Induced Histamine Release from RBL-2H3 Cells and Rat Mast Cells. Biosci Biotechnol Biochem. 1998;62(7):1284–1289.
  26. Shaik YB, Castellani ML, Perrella A, e.a. Role of quercetin (a natural herbal compound) in allergy and inflammation. J Biol Regul Homeost Agents. 20(3–4):47–52.
  27. Trombetta D, Occhiuto F, Perri D, e.a. Antiallergic and antihistaminic effect of two extracts of Capparis spinosa L. flowering buds. Phyther Res. 2005;19(1):29–33.
  28. Itoh T, Ohguchi K, Iinuma M, Nozawa Y, Akao Y. Inhibitory effect of xanthones isolated from the pericarp of Garcinia mangostana L. on rat basophilic leukemia RBL-2H3 cell degranulation. Bioorg Med Chem. 2008;16(8):4500–4508.
  29. Chairungsrilerd N, Furukawa K-I, Ohta T, Nozoe S, Ohizumi Y. Histaminergic and Serotonergic Receptor Blocking Substances from the Medicinal Plant Garcinia mangostana. Planta Med. 1996;62(5):471–472.
  30. Xie Z, Sintara M, Chang T, Ou B. Daily consumption of a mangosteen-based drink improves in vivo antioxidant and anti-inflammatory biomarkers in healthy adults: a randomized, double-blind, placebo-controlled clinical trial. Food Sci Nutr. 2015;3(4):342–348.
  31. Shin T-Y, Park S-B, Yoo J-S, e.a. Anti-allergic inflammatory activity of the fruit of Prunus persica: Role of calcium and NF-κB. Food Chem Toxicol. 2010;48(10):2797–2802.
  32. Choi SP, Kim SP, Kang MY, Nam SH, Friedman M. Protective Effects of Black Rice Bran against Chemically-Induced Inflammation of Mouse Skin. J Agric Food Chem. 2010;58(18):10007–10015.
  33. Gregory S. Kelly. Bromelain: A Literature Review and Discussion of its Therapeutic Applications. Alt Med Rev. Published 1996.
  34. Thornhill SM, Kelly A-M. Natural Treatment of Perennial Allergic Rhinitis. Altern Med Rev. 2000;55(55):448–454.
  35. Atala E, Fuentes J, Jose Wehrhahn M, Speisky H. Oxidation of Quercetin and Its Structural Analogues Differentially Affects Its Antioxidant Properties. Free Radic Biol Med. 2016;100:S93.
  36. Hattori M, Mizuguchi H, Baba Y, e.a. Quercetin inhibits transcriptional up-regulation of histamine H1 receptor via suppressing protein kinase C-δ/extracellular signal-regulated kinase/poly(ADP-ribose) polymerase-1 signaling pathway in HeLa cells. Int Immunopharmacol. 2013;15(2):232–239.
  37. Rogerio AP, Kanashiro A, Fontanari C, e.a. Anti-inflammatory activity of quercetin and isoquercitrin in experimental murine allergic asthma. Inflamm Res. 2007;56(10):402–408.
  38. Quercetin | University of Maryland Medical Center.
  39. Bucca C, Rolla G, Oliva A, Farina JC. Effect of vitamin C on histamine bronchial responsiveness of patients with allergic rhinitis. Ann Allergy. 1990;65(4):311–314.
  40. Kemper KJ. Historical and Popular Uses. 1999.
  41. Bagchi D, Bagchi M, Stohs S j, Ray SD, Sen CK, Preuss HG. Cellular protection with proanthocyanidins derived from grape seeds. Ann N Y Acad Sci. 2002;957:260–270.
  42. Grimm T, Chovanová Z, Muchová J, e.a. Inhibition of NF-κB activation and MMP-9 secretion by plasma of human volunteers after ingestion of maritime pine bark extract (Pycnogenol). J Inflamm. 2006;3(1):1.
  43. Zimmermann I, Ulmer WT. Effect of intravenous histamine, allergen (Ascaris suum Extract) and compound 48/80 and inhaled allergen-aerosol on bronchoconstriction and histamine release. Respiration. 1981;42(1):30–42.
  44. Roschek B, Fink RC, McMichael M, Alberte RS. Nettle extract (Urtica dioica) affects key receptors and enzymes associated with allergic rhinitis. Phyther Res. 2009;23(7):920–926.
  45. Mittman P. Randomized, Double-Blind Study of Freeze-Dried Urtica dioica in the Treatment of Allergic Rhinitis. Planta Med. 1990;56(1):44–47.
  46. Schapowal A, Study Group. Treating intermittent allergic rhinitis: a prospective, randomized, placebo and antihistamine-controlled study of Butterbur extract Ze 339. Phyther Res. 2005;19(6):530–537.
  47. Schapowal A, Petasites Study Group. Randomised controlled trial of butterbur and cetirizine for treating seasonal allergic rhinitis. BMJ. 2002;324(7330):144–146.
  48. Gex-Collet C, Imhof L, Brattström A, Pichler WJ, Helbling A. The butterbur extract petasin has no effect on skin test reactivity induced by different stimuli: a randomized, double-blind crossover study using histamine, codeine, methacholine, and aeroallergen solutions. J Investig Allergol Clin Immunol. 2006;16(3):156–161.
  49. Danesch U, Rittinghausen R. Safety of a patented special butterbur root extract for migraine prevention. Headache. 2003;43(1):76–78.
  50. Matkovic Z, Zivkovic V, Korica M, Plavec D, Pecanic S, Tudoric N. Efficacy and safety of Astragalus membranaceus in the treatment of patients with seasonal allergic rhinitis. Phyther Res. 2009;24(2):n/a-n/a.
  51. Mao TK, Water J Van de, Gershwin ME. Effects of a Spirulina-Based Dietary Supplement on Cytokine Production from Allergic Rhinitis Patients. J Med Food. 2005;8(1):27–30.
  52. Cingi C, Conk-Dalay M, Cakli H, Bal C. The effects of spirulina on allergic rhinitis. Eur Arch Oto-Rhino-Laryngology. 2008;265(10):1219–1223.
  53. Shin HS, Bae M-J, Jung SY, Shon D-H. Preventive effects of skullcap (Scutellaria baicalensis) extract in a mouse model of food allergy. J Ethnopharmacol. 2014;153(3):667–673.